用途：AquaPen手持式藻類葉綠素?zé)晒鉁y量儀設(shè)計輕巧，可在現(xiàn)場或?qū)嶒炇铱焖?、可靠的測量浮游藻類的葉綠素?zé)晒鈪?shù)。它配備有藍(lán)色和紅色LED發(fā)射器、光學(xué)過濾，并準(zhǔn)確地聚焦提供高達(dá)3000μmol.m-2.s-1的光。藍(lán)色激發(fā)光（455 nm）用于海藻葉綠素激發(fā)，橙紅色的激發(fā)光（630nm處）用于激發(fā)藻藍(lán)色素適用于藍(lán)藻測量。AquaPen可以測量自然界水體中低濃度的浮游植物含量，靈敏度高達(dá)0.5μg Chl/L，。 測量的數(shù)據(jù)存儲于儀器內(nèi)部，通過藍(lán)牙或USB與計算機(jī)連接，采用專業(yè)的FluorPen軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)傳輸和分析功能，表格和圖形顯示結(jié)果。參數(shù)包括FT，QY，NPQ，OJIP分析，光響應(yīng)曲線，以及在680和720nm的光密度。
AquaPen有兩種版本：AquaPen AP 110-C，比色皿式和AquaPen AP 110-P，探頭式。
測量原理：利用調(diào)制熒光測量技術(shù)，內(nèi)置LED光源，內(nèi)設(shè)測量給光程序測量并計算葉綠素?zé)晒忭憫?yīng)的各種參數(shù)。
應(yīng)用領(lǐng)域：
藻類光合特性與代謝研究；
生物與非生物脅迫檢測；
藻類抗脅迫能力研究；
湖沼生物學(xué)研究；
海洋學(xué)研究；
生物工程學(xué)
技術(shù)規(guī)格：
探頭主體 | |
測量和計算的參數(shù) | F0 ; FT ; FM ; FM ' ; QY; OJIP; NPQ 1,2; LC 1,2,3; OD680 , OD720等20多個參數(shù) （NPQ1，2：2種給光程序的熒光淬滅曲線；LC1，2，3：3種給光程序的光響應(yīng)曲線）；OD光密度值僅比色皿版本可以測量。 |
飽和光強(qiáng)度 | 0~100%可調(diào)，最大3000μmol(photon)/m2.s |
光化光強(qiáng)度 | 10到1000μmol(photon)/m2.s可調(diào) |
測量光 | 藍(lán)色和紅色測量光，0~100%可調(diào)，最大0.09μmol(photon)/m2/脈沖 |
激發(fā)光源 | AP110-C：藍(lán)色 （455 nm）和紅橙色（630 nm）LED，光學(xué)過濾，精準(zhǔn)聚焦； AP110-P：藍(lán)色 （470 nm），其他波長可選。 |
探測波長范圍 | PIN光電二極管帶667~750nm濾光器 |
FluorPen軟件 | 1.1版本，Windows 7或更高 |
存儲容量 | 最大16MB |
數(shù)據(jù)存儲容量 | 最大149000個數(shù)據(jù)點 |
顯示 | 2×8字符LCD顯示屏 |
按鍵 | 密封2鍵 |
自動關(guān)機(jī) | 無操作5分鐘后自動關(guān)機(jī) |
電源 | 可充電鋰電池，2000mAh |
電池電量 | 典型情況下可連續(xù)操作48個小時，低電量LCD顯示 |
尺寸 | 165 mm×65 mm×55 mm |
重量 | 290克 |
樣品固定器 | AP110-C：4ml比色皿； AP110-P：潛水式光學(xué)探頭。 |
工作環(huán)境 | 溫度0~+50℃，相對濕度0~95%（非冷凝） |
存儲環(huán)境 | 溫度-10~+60℃，相對濕度0~95%（非冷凝） |
案例介紹：
案例1：高溫脅迫后，微球藻在生物反應(yīng)器內(nèi)熒光參數(shù)的恢復(fù)。
隨著恢復(fù)時間的延長，NPQ值逐漸降低，同時Fv’/Fm’增加，表明微球藻光合活性得到恢復(fù)。
案例2：PAHs（多環(huán)芳香烴，致癌物）的濃度及處理時間對兩個不同樣地的浮游藻類光合活性(Fv/Fm)的影響
毒性培養(yǎng)24h后，浮游藻類光合活性受到影響。兩個地點的最高濃度實驗組的Fv/Fm明顯下降（從0.65分別下降至0.24和0.4）。其中Thau地區(qū)的藻類光合活性始終沒有恢復(fù)，表明PSII系統(tǒng)受到不可逆損傷；Bizerte地區(qū)的經(jīng)120h后完全恢復(fù)。
近期發(fā)表文獻(xiàn)：
GOIRIS K., VAN COLEN W., WILCHES I. ET AL. (2015): Impact of nutrient stress on antioxidant production in three species of microalgae. Algal Research. Volume 7, Pages 51-57. DOI:10.1016/j.algal.2014.12.002;
DE MARCHIN T., GHYSELS B., NICOLAY S. ET AL. (2014) Analysis of PSII antenna size heterogeneity of Chlamydomonas reinhardtii during state ransitions. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics, Volume 1837, Pages 121-130. DOI:10.1016/j.bbabio.2013.07.009;
MALAPASCUA J. R. F., JEREZ C. G., SERGEJEVOVá M. ET AL. (2014). Photosynthesis monitoring to optimize growth of microalgal mass cultures: application of chlorophyll fluorescence techniques. Aquatic Biology; Volume 22, Pages 123–140. DOI: 10.3354/ab00597; ?SALEH M. M., MATORIN D. N., ZAYADAN B. K. ET AL. (2014). Differentiation between two strains of microalga Parachlorella kessleriusing modern spectroscopic method. Botanical Studies, Pages 55-53. DOI: 10.1186/s40529-014-0053-7;
THRANE J. E., HESSEN D. O. AND ANDERSEN T. (2014). The Absorption of Light in Lakes: Negative Impact of Dissolved Organic Carbon on Primary Productivity; Ecosystems. Volume 17: Pages 1040–1052. DOI: 10.1007/s10021-014-9776-2;
THOMMER G., LEYNAERT A., KLEIN C. ET AL. (2013). Phytoplankton phosphorus limitation in a North Atlantic coastal ecosystem not predicted by nutrient load. Journal of Plankton Research. 0(0). Pages 1 – 13. DOI:10.1093/plankt/fbt070;
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產(chǎn)地：捷克
